Сестринское дело общий анализ крови

Сестринское дело общий анализ крови

1. Подготовка рабочего места для исследования.

На двоих студентов для забора крови должны быть подготовлены:

Реактивы:

  • спирт этиловый 70%;
  • 5% раствор цитрата натрия;
  • физраствор,
  • трансформирующий раствор;
  • 5% раствор уксусной кислоты.

Оборудование: вата; стерильные скарификаторы; стерильные капилляры Панченкова; капилляры Сали; предметные стекла с лункой; предметные стекла; шлифованное стекло; штатив с пробирками; штатив Панченкова; градуированные пипетки; резиновые груши; емкости с дезраствором для использованной ваты, капилляров, скарификаторов.

2. Подготовительная работа

  • Промывают капилляр Панченкова 5% раствором цитрата натрия.
  • Набирают цитрат натрия в капилляр Панченкова до метки «75» и выдувают

его в лунку предметного стекла (или в пробирку).

  • Разливают реактивы по пробиркам: в одну пробирку вносят 4мл физраствора; в другую — 5мл трансформирующего раствора; в третью — 0,4 мл 5% раствора уксусной кислоты.

3. Забор крови из пальца

  • Делают прокол кожи.
  • После удаления первой капли делают 2 мазка.
  • Набирают из пальца кровь в капилляр Панченкова выше метки «0» («К») – почти полный капилляр.
  • Спускают кровь из капилляра Панченкова до метки О «К» на предметное

стекло – она будет использована для определения содержания гемоглобина,

подсчета количества эритроцитов и лейкоцитов.

  • Остальную кровь из капилляра Панченкова спускают в цитрат натрия и

тщательно перемешивают кровь с цитратом.

  • Капилляром Сали с предметного стекла набирают 0,02 мл цельной крови и вносят её в физраствор – для подсчета эритроцитов.
  • 2-3 промывают капилляр Сали физраствором.
  • Перемешивают кровь с физраствором.
  • Капилляром Сали с предметного стекла набирают 0,02 мл цельной крови и вносят её в трансформирующий раствор – для определения концентрации гемоглобина.
  • 2-3 промывают капилляр Сали трансформирующим раствором.
  • Тщательно перемешивают содержимое пробирки и замечают время – 20

минут.

  • Капилляром Сали с предметного стекла набирают 0,02 мл цельной крови и вносят её в раствор уксусной кислоты – для подсчета количества лейкоцитов.
  • 2-3 промывают капилляр Сали раствором уксусной кислоты.
  • Тщательно перемешивают содержимое пробирки.
  • Набирают смесь крови с цитратом в капилляр Панченкова без пузырьков воздуха до метки «0» и ставят капилляр в штатив Панченкова на 1 час.

4. Проведение исследований

  • Через 20 минут колориметрируют смесь крови с трансформирующим раствором на ФЭКе или МИНИГЕМе.
  • При использовании ФЭКа концентрацию гемоглобина определяют по калибровочному графику.
  • Готовят к работе счетную камеру – притирают к камере Горяева покровное стекло так, чтобы появились радужные кольца.
  • Тщательно встряхивают пробирки с кровью, разведенной физраствором и уксусной кислотой.
  • Заполняют одну сетку камеры Горяева смесью крови и физраствора (для подсчета эритроцитов), а другую – кровью с уксусной кислотой (для подсчета лейкоцитов).
  • Оставляют камеру в горизонтальном положении на 1 минуту для оседания клеток крови.
  • Готовят микроскоп к работе: настраивают свет, конденсор опускают.
  • Подсчитывают под микроскопом (окуляр 10х или 15, объектив 8х) в одной сетке камеры Горяева эритроциты в пяти больших разграфленных квадратах по диагонали сетки, а затем, в другой сетке счетной камеры — лейкоциты в 100 больших не разграфленных квадратах.
  • По формулам рассчитывают количество эритроцитов и лейкоцитов в 1л крови
  • Через 1 час снимают показания СОЭ.
  1. Ознакомиться с вариантами морфологии лейкоцитов при наследственных аномалиях с помощью обучающей компьютерной программы PBTutor.
  2. Зарисовать наследственные аномалии морфологии лейкоцитов типа Пельгера, Альдера, Чедиака, Май-Хегглина (см. рис. 7).
  3. Провести общий анализ крови.
  4. Результаты исследования оформить в виде таблицы:
  1. Подсчитать лейкоцитарную формулу в предложенном мазке крови.
  2. Результаты подсчета лейкоформулы оформить в виде таблицы:

источник

Кровь для клинического анализа берут из IV пальца левой руки. Если это по каким-либо причи­нам сделать невозможно, то кровь можно получить из любого другого пальца. Наиболее удобным местом для укола является мякоть пальца слева от срединной ли­нии, на некотором расстоянии от ногтя (у маленьких детей местом укола служит мочка уха, большой палец ноги или пятка).

· Подготовить на манипуляционном столе набор для забора крови из

пальца, проверив целостность упаковок и дату стерилизации:

· индивидуальное стерильное предметное часовое стекло или пробирку одноразового использования, стерильное предметное стекло для приготовления мазка крови, резиновый баллончик, перчатки.

· на рабочем столе оформить сопроводительные документы;

· помочь пациенту найти удобное положение;

· разъяснить пациенту суть предстоящей процедуры, создавая

атмосферу доверия, предоставляя возможность задать вопросы;

· обработать руки спиртовым антисептиком;

· Левой рукой лаборант захватывает IV палец левой руки обследуемого, слегка сдавливая при этом мякоть пальца в области предполагаемого укола. В пра­вую руку лаборант берет иглу для одноразового пользо­вания и располагает ее строго перпендикулярно отно­сительно места предполагаемого укола. обработать подушечку пальца стерильным ватным шариком, смоченным спиртовым антисептиком;

· сбросить шарик в емкость для отходов «Класса. Б»;

· вскрыть одноразовый скарификатор и сделать прокол на подушечке

безымянного пальца. Укол лучше производить сбоку, где более густая

капиллярная сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от толщины кожи;

· использованный скарификатор сбросить в контейнер «Для колющих

· сухим стерильным шариком убрать каплю крови с пальца

пациента, шарик сбросить в емкость для отходов «Класса Б»;

· произвести забор крови из пальца с использованием стерильных

капилляров или одноразовых пробирок;

Взятие крови для гематологических исследований может осуществляться 3 способами:

I. После прокола пальца несколько капель крови (не менее 3-4) спускают на индивидуальное предметное (часовое) стекло или гнездо пластикового планшета, перемешивают и используют для работы.

II. Кровь набирают индивидуальным, стерильным капилляром Панченкова, предварительно смоченным цитратом натрия.

III. После прокола кожи пальца, 6-8 капель крови спускают в пластиковую пробирку с антикоагулянтом. К» ЭДТА или К3ЭДТА (трилон Б) из расчета 1,5-2,2 мг на 1 мл крови, либо в специальные пластиковые пробирки одноразового пользования, обработанных. Сразу же после взятия пробу необходимо тщательно перемешать, перевернув пробирку крышкой вниз не менее 10 раз.

В случае использования 1 или 2 способа взятия крови в лаборатории заранее готовятся следующие пробирки с:

1. 4 мл 0,9% изотонического раствора натрия хлорида для подсчета числа эритроцитов,

2. 5 мл трансформирующего раствора для определения гемоглобина,

3. 0,4 мл 3% раствора уксусной кислоты для подсчета числа лейкоцитов.

4. 5% раствором трехзамещенного цитрата натрия, набранного в капилляр Панченкова до метки 25 и слитого в пробирку для определения СОЭ.

Сразу после взятия крови в 1, 2 и 3-ю пробирки добавляют по 20 мкл крови и несколько раз промывают пипетку в верхнем слое жидкости. Исследование крови начинают с разведения для эритроцитов, так как дальнейшая работа по определению количества лейкоцитов и содержания гемоглобина связана с использованием реактивов, лидирующих эритроциты. Для определения СОЭ в капилляр, промытый цитратом натрия, набирают кровь до метки 0 (100 делений) и выдувают ее в пробирку с раствором цитрата натрия (соотношение крови и реактива — 4:1), пробирку встряхивают.

Для исследования лейкоцитарной формулы, морфологии эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов готовят мазки крови: вытирают место укола сухим шариком ваты и наносят каплю крови на сухое обезжиренное предметное стекло, затем быстро готовят тонкие мазки с помощью шлифованного стекла

Внимание! Кровь забирается только самотеком!

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: При сдаче лабораторной работы, студент делает вид, что все знает; преподаватель делает вид, что верит ему. 9046 —

| 7200 — или читать все.

195.133.146.119 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)

очень нужно

источник

Дополнительные лабораторные методы исследования.

Общий анализ крови (ОАК) —это определение гемоглобина, эритроцитов, цветного показателя, лейкоцитов, подсчет лейкоцитарной формулы, определение СОЭ и при необходимости тромбоцитов.

Подготовка пациента к ОАК :

  • отрицательными факторами, изменяющими состав крови являются физическая и умственная нагрузка, применение лекарственных средств, особенно в инъекциях, действие рентгеновских лучей, физиотерапевтических процедур;
  • анализ крови берется утром натощак, повторные исследования надо проводить в одни и те же часы, так как состав крови колеблется на протяжении суток.
  • в клинико- диагностической лаборатории,
  • у стационарных больных в отделении или в палате, если пациент находится на постельном режиме,
  • амбулаторно по показаниям на дому.

При заборе крови вне лаборатории используются:

  • Индивидуальные стерильные укладки на каждого пациента.
  • — 3 ватных шарика / один — для обработки кожи пальца перед проколом, второй / сухой /- для снятия первой капли крови, третий- для закрытия ранки после забора крови /,
  • — 1 скарификатор — копье,
  • — 1 короткий капилляр 0.02 мл и 1 длинный капилляр Панченкова.
  • Вакуумные пробирки.

Подготовка рабочего места для взятия ОАК в лаборатории:

лабораторный столик,

— емкость с дезраствором и салфетки для обработки столика двухкратно,

— емкости с дезрастворами для обработки шариков, перьев и капилляров,

— капилляры, грушевидный баллон для капилляра,

— одноразовые стерильные скарификаторы,

— штативы, в том числе штатив Панченкова,

Подготовка медработника. Перед забором крови лаборант готовит руки также как перед выполнением инъекций.

После каждого забора крови у пациента, если нет загрязнений кровью, перчатки обрабатываются ватным шариком, смоченным 70º спиртом, перчатки меняются после пятого пациента.

Взятие крови: рука пациента лежит на столе.

Кровь берут из 4 пальца нерабочей руки, у новорожденных из пятки или из большого пальца ноги. Можно брать кровь из вены или из мочки уха.

Капиллярная кровь.Перед проколом лаборант фиксирует палец пациента двумя пальцами левой руки. Нельзя давить на палец, так как при этом в кровь попадает тканевая жидкость, что существенно искажает результаты исследования. Кожа в месте прокола должна быть сухой, розовой и теплой, кровь — свободно вытекать из ранки. Кожу пальца обрабатывают ватным шариком, смоченным 70º спиртом, прокол проводят чуть сбоку от средней линии на глубину 2-3 мм, первую каплю крови снимают сухим ватным шариком, не прикасаясь к ранке. После взятия крови к раневой поверхности прикладывается новый стерильный тампон, смоченный 70° спиртом. Все три шарика помещают в дезраствор.

Венозная кровь.Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены.

При взятии венозной крови игла должна быть достаточно большого диа­метра и иметь короткий срез, чтобы не травмировать противоположную стенку вены во избежа­ние гемолиза. При наложении жгута давление в вене должно обеспечивать минимальный стаз, при котором клетки не повреждаются.

Кровь для гематологических исследований должна поступать свободным током непосред­ственно в пластиковую пробирку с крышкой, содержащую антикоагулянт. Взятие крови шпри­цом без антикоагулятна с последующим помещением в пробирку недопустимо из-за формиро­вания микросгустков и гемолиза. Оптимальным способом аспирации крови являются вакутейнеры с фиолетовой крышкой (вакумные системы взятия крови) для ОАК, которые содержат определенное строго дозированное количество антикоагулянта и обеспечивают стандартные условия аспирации все­го объема крови. Kроме того, при этом отсутствует непосредственный контакт фельдшера, медицинской се­стры или лаборанта с кровью больного, что обеспечивает профилактику вирусных инфекций, передающихся парентеральным путем.

Для точного соотношения кровь-антикоагулянт необходимо набрать полностью всю пробирку до отметки или указанного объема крови!

Кровь на СОЭ так же берется из локтевой вены вакуумной системой, но в тонкую пробирку с черной крышкой! При назначении и ОАК, и СОЭ обе пробирки одного пациента (фиолетовая и черная) подписываются одним и тем же номером! И этот номер фиксируется в направлении.

В педиатрии рекомендуется использовать микрометоды. После прокола капиллярная кровь помещается в специальный микрокапилляр или микропробирку, обработанные антикоагу­лянтом.

Оформление и доставка крови.

На пробирках в обязательном порядке должны указываться идентификационный номер пациента и название медицинского учреждения. Идентификационный номер должен сохраняться в регистрационном журнале учреждения.

Кровь пациента до передачи курьеру должна храниться в холодильнике (+2 — +4°С) или в контейнере с хладогеном.

Пробирки с кровью отдаются курьеру вместе с направлениями. Номера пробирок должны соответствовать номерам на направлениях.

Кровь отправляется в лабораторию в день забора. До следующего дня хранить кровь нельзя! Кровь нельзя замораживать!

studopedia.org — Студопедия.Орг — 2014-2019 год. Студопедия не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования (0.001 с) .

источник

№ п/п Коды компетенций Виды работ Содержание работ
ПК 2.1 Подготовка реактивов, лабораторной посуды, оборудования рабочего места для проведения лабораторных гемато-логических исследо-ваний. Изучение нормативной документации по организации работы по проведению гематологических исследований. Познакомиться с руководящими документами по организации работы по проведению гематологических исследований. Записать структуру гематологического отдела лаборатории. Записать основные правила техники безопасности (ТБ). Расписаться в журнале по ТБ после инструктажа. Оформить инструктаж по ТБ в дневнике. Проведение оснащение рабочего места в соответствии с предстоящими лабораторными гематологическими исследованиями и подготовка необходимого оборудования к работе. Ознакомиться с оснащением рабочих мест по выполнению гематологических исследований (по выполнению общего. (клинического) анализа крови и проведения дополнительных исследований крови). Записать в дневниках приборы, оборудование и другое оснащение, необходимое для проведения лабораторных гематологических исследований. Познакомиться с методикой предстоящего исследования. Подготовить необходимые приборы. Приготовление реактивов. Приготовить необходимые реактивы для забора проб и проведения исследований. Записать порядок маркировки реактивов и их утилизации. Провести маркировку посуды для хранения реактивов. Дозировать реактивы. Провести маркировку посуды для хранения реактивов. Записать проделанную работу в дневник. Проведение подготовки и приёма биоматериала. Познакомиться с нормативной документацией по доставке венозной и капиллярной крови в КДЛ. Провести приём биоматериала в соответствии с методиками приёмки биологических жидкостей для обеспечения соблюдение их качественного и количественного состава. Провести подготовку материала, провести контроль качества отобранных проб крови в микроветтах и вакутейнерах. Изучить сопроводительную документацию, правильность оформления направлений, бланков. Провести маркировку проб. Оформить бланк анализа проб, другие сопроводительные документы. Записать их копию в дневник. Зарегистрировать доставленный биоматериал в журнале регистрации. Обеспечить правильное хранение биоматериала Подготовить всё необходимое для проведения гематологических исследований. Записать всю проделанную работу в дневник.
ОК 2,ОК 5, ОК 8 , ОК. 9
ПК 2.1 ПК 2.2 Проведение забора капиллярной крови. Приём направлений на ОАК. Изучение сопроводительной документации, маркировка и оформление бланков анализа. Познакомиться с нормативной документацией по требованиям к забору крови. Записать в дневник соответствующие документы. Принять направления на ОАК. Познакомиться с алгоритмом забора крови. Записать алгоритм в дневник. Оснащение рабочего места для забора проб. Приготовить необходимые реактивы для проведения взятия капиллярной крови. Подготовить необходимые приборы, посуду и инструментарий. При использовании ручного метода общего анализа крови разлить в пробирки 3% раствор хлорида натрия и 3% раствор уксусной кислоты (для подсчёта лейкоцитов и эритроцитов) и трансформирующий раствор (для определения содержания гемоглобина гемиглобинцианидным методом.. Подготовить рабочее место, в том числе стерильную вату (уточнить срок хранения), ёмкости для обеззараживания скарификаторов, ваты использованной, капилляров и др. Взятие крови. Надеть стерильные перчатки, маску, экран (очки). Продезинфицировать кожу пациента, сделать прокол кожи стерильным скарификатором. Выполнить взятие капиллярной крови, провести разведение крови для определения эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина соответствии с методиками для обеспечения их качественного и количественного состава. Приготовить мазок крови. Оформить практическую работу в дневниках (записать проведённую работу и количество отобранных проб капиллярной крови, также копии направлений на ОАК).
ОК 2 ОК 9 ОК 12 ОК 13
ПК 2.2, ПК 2.3 Проведение общего анализа крови. Приём направлений на ОАК. Изучение сопроводительной документации, маркировка и оформление бланков анализа. Проверить готовность рабочее место для исследования ОАК. Проведение общего анализа крови ручными методами: — исследовать жидкую часть крови (определение гемоглобина, лейкоцитов, эритроцитов), — поставить и провести учёт СОЭ. Приготовить мазок крови. Провести окраску мазка крови по Романовскому-Гимзе в модификации Филипссона. Оценить качество мазка. Провести подсчёт лейкоцитарной формулы с помощью микроскопа. Записать всю проделанную работу последовательно в дневники с указанием количества проведённых анализов. Оформить бланки анализов. Записать их копию в дневник.
ОК 2, ОК 3, ОК 9, ОК 10, ОК 11, ОК 13, ОК 15
ПК 2.1, ПК 2.2, ПК 2.3 Проведение дополнительных гематологических исследований. Проведение дополнительных гематологических исследований крови. Познакомиться с нормативной документацией по выполнению дополнительных исследований крови. Выполнить дополнительные гематологические исследования крови ручными методами: — провести забор крови и подсчёт тромбоцитов по методу Фонио, — провести забор крови и подсчёт ретикулоцитов, — -определить длительность кровотечения по Дьюку, — определить время свёртывания капиллярной крови по Сухареву, — определить осмотическую резистентность эритроцитов (ОРЭ), — определить гематокрит. Записать особенности и методы их проведения. Записать результаты, сделать необходимые расчёты. Оформить результаты в дневнике.
ОК 9, ОК 14, ОК 15
ПК 2.2, ПК 2.3 Определение группы и резус- принадлежности крови. Проведение лабораторных гематологических исследований группы крови и резус-фактора. Познакомиться с методами определения групп крови и резус-фактора, в том числе современными методиками. Записать правила определения, особенности, и преимущества новых методов. Познакомиться с нормативной документацией по выполнению соответствующих исследований. Записать ошибки при определении групп крови и резус-пренадлежности. Записать методики в дневники. Отметить возможные ошибки при определении. Подготовить рабочее место для определения групп крови и резус — фактора. Провести определения группы крови системы АВО прямым и перекрёстным методами. Провести определения резус-фактора различными методами. Записать результаты бланком анализа. Оформить дневник. Привести в порядок рабочие места.
ОК 2,ОК 3, ОК 5,ОК 6, ОК, 9, ОК 10, ОК 11, ОК 13, ОК 14, ОК 15
ОК 2,ОК 3, ОК 5,ОК 6, ОК, 9, ОК 10, ОК 11
ПК 2.2, ПК 2.4 Работа на гематологи-ческих анализаторах Подготовка анализаторов к работе. Познакомиться с нормативной документацией по выполнению исследований крови на гематологическом анализаторе. Записать предназначение, схему устройства и принцип работы гематологических анализаторов и другого современного оборудования, которое есть в наличии КДЛ. Изучить правила подготовки прибора к исследованию, изучить инструкцию гематологического анализатора. Заполнить бланки анализа согласно направлениям на исследование. Участвовать в проведении тестирования анализаторов перед работой. Проведение исследования крови на гематологических анализаторах. Выполнить функции оператора анализаторов под контролем непосредственного руководителя: . задание параметров, — ввод данных, — контроль работы. Проведите учёт результатов, вывод на дисплей, распечатку. Записать результаты исследования бланком анализа. Скопировать его в дневник. Привести в порядок рабочие места согласно требованиям санитарно-эпидемического режима. Записать.
ОК 6, ОК 9, ОК 14, ОК 15
ОК 2,ОК 3, ОК 5,ОК 6, ОК 9, ОК 10, ОК 11, ОК 15
ПК 2.5 Проведение утилизации капиллярной и веноз-ной крови. Изучение нормативных документов по утилизации крови в КДЛ. Внимательно изучить нормативные документы по утилизации крови. Записать алгоритм в дневник. Выполнение утилизации крови согласно требованиям нормативных документов. Приготовить дезинфицирующие растворы по прописи. Маркировать дезинфицирующие растворы. Зарегистрировать приготовление дезинфицирующих растворов в журнале регистрации приготовления дезинфицирующих средств. Провести утилизацию крови. Записать порядок и правила утилизации.
ОК 3, ОК 11, ОК 13, ОК 15

Общие условия выбора системы дренажа: Система дренажа выбирается в зависимости от характера защищаемого.

Организация стока поверхностных вод: Наибольшее количество влаги на земном шаре испаряется с поверхности морей и океанов (88‰).

Поперечные профили набережных и береговой полосы: На городских территориях берегоукрепление проектируют с учетом технических и экономических требований, но особое значение придают эстетическим.

Механическое удерживание земляных масс: Механическое удерживание земляных масс на склоне обеспечивают контрфорсными сооружениями различных конструкций.

источник

Забор крови, с последующим её исследованием производился у мужчин в возрасте от 20-ти до 35-ти лет, до и после физической нагрузки. В исследовании приняла участие группа из тридцати трёх человек, каждый из которой, после взятия пробы до физической нагрузки, проходил стандартную тренировку в течение часа. В таблице 3 сведены типы и продолжительность упражнений, которым подвергались все испытуемые.

Таблица 3 — типы физической нагрузки, применяемой в исследовании

Тренировка включала в себя 15 минут бега в нормальном темпе (один тридцатиметровый круг в минуту); выполнение комплекса упражнений (подтягивания, отжимания от пола, приседания) в течение 15 минут в ускоренном темпе (20 подтягиваний в минуту, 50 приседаний в минуту, 30 отжиманий в минуту); 30 минутный спарринг в нормальном темпе (20-25 бросков в минуту). По окончанию тренировки вновь бралась проба такого же объёма, у тех же испытуемых, что и до тренировки.

Основные этапы выполнения общего анализа крови:

2 приготовление мазков крови;

3 проведение анализов на гематологическом анализаторе;

6 подсчёт лейкоцитарной формулы.

Взятие материала. Кровь для исследования получили путём прокола четвёртого пальца левой руки обследуемого слева от срединной линии на некотором расстоянии от ногтя. В зависимости от толщины кожи глубина прокола составляет 2-3 мм. Обработанная кожа пальца высыхает несколько секунд. Цель этого «высыхания» — исключить растекание крови по пальцу, а также гемолитического воздействия антисептика на эритроциты. Скарификатор одноразового использования плотно зажимается между указательным и большим пальцами правой руки; производится прокол. Прокол произвели перпендикулярно рисунку кожных покровов пальца, так как в этом случае происходит повреждение нескольких капилляров, ход которых совпадает с ходом линий кожного рисунка. Учитываем, что разрез произведённый параллельно кожным линиям, спадается, что затрудняет забор крови. Первую, выступившую каплю крови удалили ватным тампоном, а последующие были взяты на исследование. Взятую кровь поместили в пронумерованные и обработанные раствором антикоагулянта. Трилоном-Б, пластиковые микрокюветы. На следующем рисунке показаны одноразовые пластиковые микрокюветы, более удобные и безопасные в использовании, чем стеклянные пробирки.

Все манипуляции связанные с забором крови проводились используя стерильные комплекты инструментов для взятия крови (капилляры Панченкова, предметные стёкла, скарификаторы и микрокюветы). Для каждого обследуемого использовалась индивидуальная пара перчаток и стерильных ватных укладок. Все манипуляции проводились в соответствии с требованиями приказа №165 МЗ РБ от 25.11.2002 г «О методах стерилизации и дезинфекции в медицинских учреждениях» [21].

Рисунок 1 — Микрокюветы с раствором антикоагулянта

Приготовление мазков крови. Для изготовления мазка крови использовались тщательно обезжиренные предметные стёкла. Мазок крови готовился шлифованным стеклом с идеально ровным краем, ширина которого была приблизительно на 2-3 мм уже предметного стекла. К куполу свеже выпущенной из прокола капли было сделано прикосновение предметным стеклом на расстоянии 1,5-2 см от его края, не касаясь кожи в месте прокола. Размер капли на стекле не менее 2-3 мм в диаметре. Шлифованным стеклом, приставленным к предметному под углом 45°, быстрым движением справа налево был сделан мазок. Критерием правильности выполненного мазка является его полупрозрачность и желтоватый цвет. Техника приготовления мазка крови представлена на следующем рисунке.

Рисунок 2 — Техника приготовления мазка крови

Проведение анализов на гематологическом анализаторе. Для исследований использовался гематологический анализатор SISMYX-500. Взятую кровь в миниёмкастях тщательно перемешали и поместили в загрузочную часть аппарата. Предварительно была проведена калибровка данного аппарата, которая заключалась в проведении полного анализа микрокюветы с дистиллированной водой. Определение параметров исследуемой крови протекает в автономном режиме, без непосредственного участия человека. По завершению цикла исследования сняли выданные аппаратом результаты [22].

Изображение аппарата SISMYX-500, и момента отбора пробы для анализа, представлены на рисунке 3.

Фиксация мазков крови. Данный этап предохраняет форменные элементы от содержащейся в красителях воды, под влиянием которой в не фиксированных мазках происходит гемолиз эритроцитов и изменяется морфология лейкоцитов.

Фиксатор также вызывает коагуляцию белков и тем самым закрепляет препарат на стекле. В качестве фиксирующей жидкости использовали раствор эозинметиленового синего по Май-Грюнвальду. Высушенные мазки опускались в широкогорлую банку с фиксатором на 3-5 минут. Далее пинцетом мазки были извлечены и высушены на воздухе.

Рисунок 3 — Гематологический анализатор SISMYX-500

Окраска мазков крови. Фиксированные сухие мазки поместили в контейнер, который опустили в кювету с рабочим раствором красителя и выдержали в нём экспозицию в 30 минут.

Затем, контейнер был перенесён в кювету с водопроводной водой, а затем в вертикальный штатив для сушки. В качестве красящего раствора был использован краситель по прописи Романовского-Гимзы. В состав красителя входят: азур-2 (смесь равных количеств азура-1 и метиленового синего) и эозин. Критериями правильности данной окраски являются розово-оранжевые гранулы эозинофилов, светло-розовый цвет эритроцитов, нейтрофильная зернистость фиолетового цвета.

Подсчёт лейкоцитарной формулы производят с помощью иммерсионной системы микроскопа с увеличением Ч630. Для работы используется специальное иммерсионное масло, каплю которого наносят на препарат. Удобный обзор препарата настраивают с помощью микро- и макровинтов. Для регистрации клеток при подсчёте лейкоцитарной формулы использовался счётчик лабораторный СЛ-1.

Это простейший арифмометр снабжённый клавишами, обозначенными буквами для подсчёта соответствующих видов лейкоцитов, изображён на рисунке 4.

Рисунок 4 — Счётчик лабораторный СЛ-1

Подсчёт лейкоцитов производился в тонкой части мазка, где эритроциты располагаются одиночно. Препарат просматривают по зигзагообразной линии («линии Меандра») в количестве 3-5 полей зрения. Когда сосчитано 100 клеток, счётчик издаёт характерный сигнал, что означает окончание подсчёта лейкограммы данного препарата. Подсчитывались только целые, не разрушенные клетки.

Для оценки влияния физической нагрузки на состояние показателей периферической крови использовались результаты общего анализа крови до и после физической нагрузки.

В ходе исследования нами были вычислены среднее арифметическое, стандартное отклонение, стандартная ошибка, коэффициент вариации по продуктивности и устойчивости внимания, а также по показателям темпа выполнения.

Средняя арифметическая вычисляется по формуле:

где Xi — значение признака, варианта;

где x2 — сумма квадратов центральных отклонений, т. е. квадратов разностей между каждым значением и средней арифметической;

n — 1 — число степеней свободы, равное числу объектов в группе без одного.

Ошибка стандартного отклонения:

где у — стандартное отклонение;

м — средняя арифметическая.

В результате обработки полученного материала, был проведён статистический анализ, построены графики зависимости показателей концентрации гемоглобина, количества эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов, от воздействующего на них фактора физической нагрузки, а также таблицы результатов дисперсионного анализа, для каждого из исследуемых показателей.

Статистическая обработка результатов исследований выполнена с использованием прикладных программ MS Excel 2007 и Statistica for Windows 6.0. Оценка достоверности различий осуществлялась на основе критерия Фишера. Влияние физической нагрузки на показатели крови оценено методом однофакторного дисперсионного [23].

источник

«ПМ.02. МДК.02.01. Проведение лабораторных гематологических исследований УЧЕБНОЕ ПОСОБИЕ 2014 г. Проведение лабораторных гематологических исследований. Учебное пособие. Составитель: Р.С. . »

Государственное бюджетное учреждение

«Профессиональная образовательная организация

«Астраханский базовый медицинский колледж»

Проведение лабораторных гематологических исследований.

Составитель: Р.С. Нуралиева – кандидат биологических наук,

преподаватель методов клинических лабораторных исследований Пособие предназначено для студентов медицинских колледжей, слушателей курсов повышения квалификации по специальности «Лабораторная диагностика».

В пособии представлены – правила соблюдения санитарноэпидемиологического режима в клинико-диагностических лабораториях, современные распространенные методы лабораторной диагностики при исследовании крови. Материал, входящий в данное пособие, дает возможность самостоятельно подготовиться студенту по данному материалу и осмысленно подходить к лабораторным исследованиям, понимать их диагностическую ценность.

Учебное пособие «Проведение лабораторных гематологических исследований» для студентов АБМК составлено на основании Федерального государственного образовательного стандарта среднего профессионального образования по специальности «Лабораторная диагностика», учебного плана и учебной программы профессионального модуля ПМ.02. «Проведение лабораторных гематологических исследований».

Основная задача клинической лабораторной диагностики состоит в том, чтобы помочь лечащему врачу в постановке диагноза заболевания, лечении больных, осуществлении профилактических мероприятий.

Материал пособия излагается доступно, что позволяет студентам усвоить основные положения темы, возможность самостоятельно подготовиться студенту по данному материалу и осмысленно подходить к лабораторным исследованиям, понимать их диагностическую ценность, оперировать медицинскими терминами, понимать современные распространенные методы лабораторной диагностики исследований крови, сформировать «клинический образ мышления».

Профессиональные (ПК) компетенции:

ПК 2.1. Готовить рабочее место для проведения лабораторных гематологических исследований.

ПК 2.2. Проводить забор капиллярной крови.

ПК 2.3. Проводить общий анализ крови и дополнительные гематологические исследования; участвовать в контроле качества.

ПК 2.4. Регистрировать полученные результаты.

ПК 2.5. Проводить утилизацию капиллярной и венозной крови, дезинфекцию и стерилизацию использованной лабораторной посуды, инструментария, средств защиты.

Раздел 1. «САНИТАРНО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИЙ РЕЖИМ.

Правила соблюдения санитарно-эпидемиологического режима в клинико-диагностических лабораториях Для профилактики инфицирования медицинского персонала клиникодиагностических лабораторий (КДЛ) и обследуемых больных особое значение имеет выполнение требований санитарно-эпидемиологического режима.

Сотрудники КДЛ подвергаются риску заражения СПИД, вирусными гепатитами, кишечными инфекциями и другими инфекционными заболеваниями. Главным фактором распространения этих заболеваний является инфицированный биологический материал (кровь, мокрота, моча, ликвор, сперма, кал и другие секреты и экскреты).

При организации противоэпидемических мероприятий в КДЛ необходимо руководствоваться действующими приказами Министерства здравоохранения.

Ответственность за организацию и соблюдение противоэпидемического режима при работе с потенциально опасным материалом возлагается на руководителя КДЛ.

Медицинскому персоналу КДЛ следует избегать контакта кожных покровов и слизистых оболочек с кровью и другими биологическими жидкостями, для чего необходимо:

Работать в медицинских халатах, шапочках, сменной обуви, а при угрозе разбрызгивания крови или других биологических жидкостей – в маске, защитном экране или очках, непромокаемом фартуке и нарукавниках, резиновых перчатках. Подход к использованию защитной одежды должен быть дифференцированным, учитывая степень риска инфицирования.

На рабочем месте запрещается принимать пищу, пить, курить, пользоваться косметикой.

На рабочем столе, где осуществляется забор крови, должен находиться сосуд для стерильного пинцета, тампонов, салфеток, стерильный цитрат натрия для промывки капилляров, разлитый в малых объемах, флакон с антисептиком (70% спирт), сосуд с дез.раствором для сбора отработанных ватных шариков.

На рабочих столах для обработки рук и поверхностей, загрязненных потенциально инфицированным материалом, должны находиться емкости с 70% спиртом, 6% раствором перекиси водорода с дез.раствором.

При работе с исследуемым материалом следует избегать уколов и порезов, все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лейкопластырем или напальчниками. Работать с биологическим материалом следует только в резиновых перчатках!

Недопустимо производить взятие крови из вены через иглу непосредственно в пробирку.

Запрещается пипетирование биологического материала ртом!

Все манипуляции по забору крови и сыворотки должны выполняться при помощи резиновых груш, автоматических пипеток, дозаторов.

Во избежание ранений не допускается использование стеклянных предметов с отбитыми краями.

Для предупреждения разбрызгивания биологического материала, сразу же после его взятия, пробирки следует плотно закрывать резиновыми или пластмассовыми пробками и помещать в контейнер.

Биологический материал должен транспортироваться в штативах, помещенных в контейнеры, биксы или пеналы, на дно которых кладется 4слойная сухая салфетка (на случай боя посуды или случайного опрокидывания).

Не допускается транспортировка проб крови и других биоматериалов в картонных коробках, деревянных ящиках, полиэтиленовых пакетах.

Не допускается помещение бланков направлений или другой документации внутрь контейнера, бикса, пробирок.

На рабочих местах должны быть выписки из инструктивнометодических документов, аптечки для проведения экстренной профилактической помощи при аварийных ситуациях.

Весь медицинский инструментарий (а также посуда, белье, аппараты и др.), загрязненный кровью, биологическими жидкостями, а также соприкасающийся со слизистыми оболочками, сразу после использования подлежит дезинфекции в соответствии с нормативными документами.

Основные правила соблюдения санитарно-эпидемического режима при взятии крови Взятие крови следует проводить в резиновых перчатках, соблюдая правила асептики. При взятии крови должны использоваться индивидуальные стерильные крафт-пакеты, содержащие капилляр, предметное стекло, скарификатор. На пакете должны быть проставлены дата стерилизации и роспись ответственного за стерилизацию. Индивидуальный стерильный крафт-пакет стерилен в течение 3 суток.

Перчатки обрабатывают 70% спиртом перед каждым взятием крови.

Кожу пальца обследуемого перед проколом протирают стерильным тампоном (шариком из ваты), смоченным 70% спиртом. Стерильные тампоны хранят в упаковке. Прокол кожи проводят стерильным скарификатором. Первую каплю крови осторожно снимают сухим стерильным ватным тампоном. После взятия крови к раневой поверхности прикладывают новый стерильный тампон, смоченный 70% спиртом, и пациент отпускается только после полной остановки кровотечения. Перчатки вновь обрабатываются 70% спиртом.

Взятие крови для гематологических исследований может осуществляться несколькими способами:

1-й вариант: после прокола пальца несколько капель крови (не менее 3спускают на индивидуальное стерильное предметное стекло и использует для работы;

2-й вариант: кровь набирают в стерильные индивидуальные капилляры Панченкова непосредственно с капли на поверхности кожи пальца пациента, проколотого стерильным скарификатором;

3-й вариант: кровь набирают стерильным индивидуальным капилляром Панченкова, предварительно промытым стерильным 5% раствором цитрата натрия; соотношение раствора цитрата натрия и крови равно 1:4;

4-й вариант: после прокола кожи пальца 6-8 капель крови спускают в стерильную пластиковую пробирку, в которую предварительно внесено небольшое (на кончике глазной лопаточки) количество трилона Б. Пробирку с кровью тщательно перемешивают, вращая ее между ладонями. Разлив крови пипетками по пробиркам осуществляют в лаборатории.

Мероприятия при ранениях, контактах с кровью, другими биологическими материалами Любое повреждение кожи или слизистых, загрязнение их биологическим материалом пациентов при оказании им медицинской помощи должно квалифицироваться как возможный контакт с материалом, содержащим ВИЧ или другой агент инфекционного заболевания.

1. Если контакт с кровью или другими жидкостями произошел с нарушением целостности кожных покровов (укол, порез) пострадавший должен:

снять перчатки рабочей поверхностью внутрь;

поврежденное место обработать одним из дезинфектантов (70% спирт, 5% настойка йода при порезах, 3% раствор перекиси водорода при уколах и др.);

руки вымыть под проточной водой с мылом, а затем протереть 70% спиртом;

на рану наложить пластырь, надеть напальчник;

при необходимости продолжить работу, надев новые перчатки.

2. В случае загрязнения кровью или другой биологической жидкостью без повреждения кожи следует:

обработать кожу одним из дезинфектантов (70% спирт, 3% раствор перекиси водорода и др.);

обработанное место вымыть водой с мылом и повторно обработать спиртом.

3. При попадании биологического материала на слизистые оболочки:

полости рта прополоскать 70% спиртом;

полости носа закапать 20-30% раствором альбуцида (сульфацила натрия);

глаза промыть водой (чистыми руками), закапать 20-30% раствором альбуцида (сульфацила натрия).

4. При попадании биологического материала на халат, одежду, обувь:

обеззараживаются перчатки перед снятием одежды;

при незначительных загрязнениях биологической жидкостью одежда снимается, помещается в пластиковый пакет и направляется в прачечную без предварительной обработки, дезинфекции;

при значительном загрязнении одежда замачивается в одном из дезинфектантов (кроме 6% раствора перекиси водорода и нейтрального гидрохлорида кальция, которые разрушают ткани);

личная одежда, загрязненная биологической жидкостью, подвергается стирке в горячей воде (700С) с моющим средством;

кожа рук и других участков тела под загрязненным местом одежды протирается 70% спиртом, затем промывается с мылом и повторно протирается спиртом;

загрязненная обувь двукратно протирается ветошью, смоченной в растворе одного из дезинфицирующих средств.

Аптечка для экстренной медицинской помощи Для оказания экстренной медицинской помощи при аварийной ситуации, сопровождающейся нарушением целостности кожных покровов, попаданием биологического материала на слизистые на рабочем месте, необходимо иметь аптечку со следующим набором предметов и медикаментов: напальчники (или перчатки), лейкопластырь, ножницы, спирт этиловый 70%, 20-30% раствор альбуцида (сульфацила натрия), 5% настойка йода, 3% раствор перекиси водорода.

Должны быть предусмотрены также комплекты защитной одежды в соответствии с числом медицинских работников, оказывающих медицинскую помощь (хирургический халат, маска, защитные очки или экран, пластиковый фартук, нарукавники, мешок пластиковый для сбора загрязненной одежды).

Дезинфекция лабораторного инструментария, посуды, спецодежды, биологического материала, оборудования Дезинфекция – комплекс мероприятий, направленных на уничтожение возбудителей болезней и создание условий, препятствующих их распространению в окружающей среде.

Лабораторный инструментарий (иглы, скарификаторы, капилляры, предметные стекла, пробирки, меланжеры, счетные камеры, кюветы спектрофотометров, пипетки, наконечники, резиновые груши и т.д.), биологический материал, посуда после каждого использования подвергаются тщательной дезинфекции.

Дезинфекцию изделий медицинского назначения можно осуществлять следующими методами:

Кипячение в дистиллированной воде в течение 30 минут, или в 2% 1.

растворе питьевой соды – 15 мин. Данным методом подвергаются дезинфекции изделия из стекла, металла, термостойких полимерных материалов, резины.

Паровой метод – обработка водяным насыщенным паром под избыточным давлением 0,5 кгс/см2 (4,9*104 Па) при температуре 1100С в течение 20 мин. Таким способом можно дезинфицировать изделия из стекла, металла, резины, латекса и термостойких полимеров.

Воздушный метод – сухой горячий воздух при температуре 1200С 3.

в течение 45 мин. Применяется для дезинфекции изделий из стекла и металла.

Химический метод – растворы химических веществ, температура 4.

которых не менее 180С. Данным методом подвергаются дезинфекции изделия из стекла, коррозионностойкого металла, полимерных материалов, резины.

В качестве химических дезсредств можно применять следующие растворы:

3% раствор хлорамина – 60 мин;

6% раствор перекиси водорода – 60 мин;

6% раствор перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства, разрешенного к применению МЗ РБ- 60 мин;

4% раствор формалина (по формальдегиду) – 60 мин;

2,5% раствор глютарового альдегида – 30 мин;

0,5 раствор дезоксона-1 – 60 мин;

0,6% раствор нейтрального гипохлорита кальция – 60 мин;

0,5% раствор сульфохлорантина-Д – 60 мин.

Дезинфицирующие растворы используются однократно. Для приготовления 6% перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства нужно взять 240 мл 27% перекиси водорода, 5 г моющего средства и добавить 755 мл воды. Емкости для проведения дезинфекции должны быть четко промаркированы, иметь крышки. Изделия либо полностью погружают в раствор, либо двукратно протирают салфеткой из бязи или марли с интервалом 15 мин. При загрязнении раствора кровью его обеззараживающие свойства снижаются, поэтому пипетки, пробирки, капилляры, загрязненные кровью, дезинфицируются в двух емкостях. При дезинфекции изделий, имеющих внутренние каналы, растворы дезинфицирующего средства в объеме 5-10 мл пропускают через канал с помощью груши для удаления остатков крови, сыворотки и т.д. В емкости №1 посуда отмывается от крови, а в емкости №2 замачивается на 60 мин в дезрастворе. Если в растворе №2 обнаруживается примесь крови, то необходимо всю посуду замочить на 60 мин в третьей емкости с дезраствором, который должен оставаться прозрачным. После дезинфекции способом погружения изделия промывают в проточной воде до полного удаления запаха дезинфицирующего средства.

По окончании исследования пробы биологического материала вместе с посудой, в которой они доставлялись в лабораторию, обеззараживаются в автоклаве при температуре 132+20С, давлении 2,0 кгс/см2 (1,96 105 Па) в течение 20 мин. Автоклавирование производится сотрудником лаборатории (фельдшер-лаборант, санитарка), имеющим свидетельство об окончании специальных курсов.

Обеззараживание отработанного биологического материала допускается также химическим способом с использованием дезсредств в соответствующих концентрациях, разрешенных к применению МЗ РБ. Отходы крови (сгустки, сыворотки и др.) в специальных емкостях (ведрах, кастрюлях с крышками) засыпают сухой хлорной известью, белильной известью, нейтральным гипохлоритом кальция в соотношении препарата и отходов 1:5, перемешивают и оставляют на 60 мин.

В процессе работы использованные наконечники, планшеты погружаются в емкость с 6%-ым раствором перекиси водорода или 70%-ым спиртом на 2 ч, после чего промываются под проточной водой, затем споласкиваются дистиллированной водой и высушиваются, либо после окончания работы подвергаются паровой дезинфекции в автоклаве.

Кюветы измерительной аппаратуры, пластиковые пробирки и т.д.

обеззараживаются 6%-ым раствором перекиси водорода, и промываются проточной водой.

Спектрофотометры и другая аппаратура, содержащая оптику, протирается тампоном, смоченном в 70%-ом спирте, с экспозицией 15 мин.

Затем обрабатывается 96%-ым спиртом для удаления влаги.

Рабочие поверхности столов, центрифуг, термостатов, дозаторов, лотков в конце каждого рабочего дня протирают ветошью, смоченной в дезрастворе, а в случае загрязнения кровью их немедленно следует обработать дважды с интервалом 15 мин дезинфицирующим средством (перекись водорода – 6,0%).

Использованную ветошь сбрасывают в емкость с дезраствором, которую маркируют: «Для использованной ветоши».

При загрязнении кровью или секретами мебели, инвентаря, приборов их следует немедленно дважды протереть ветошью, ватными или марлевыми тампонами, обильно смоченными дезинфицирующими растворами.

Перчатки после окончания работы, обеззараживают погружением в 3%ый раствор хлорамина или 6%-ый раствор перекиси водорода на 1 ч, или кипячением в течение 30 мин.

Влажная уборка помещений производится горячим (500-600С) мыльным раствором ежедневно. Генеральная уборка помещений проводится один раз в неделю с обязательной дезинфекцией.

Предстерилизационная очистка лабораторного инструментария

После дезинфекции лабораторный инструментарий, соприкасающийся с раневой поверхностью или слизистыми оболочками обследуемого, подлежит обязательной предстерилизационной очистке (ручным или механическим способом) и стерилизации.

Предстерилизационная очистка предусматривает удаление белковых, жировых, механических загрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов. Она осуществляется ручным или механическим способом с применением моющих средств.

В качестве моющих средств применяют «Биолот» (5 г на 1 л воды), а также растворы, содержащие 0,5% перекись водорода с синтетическими моющими средствами, разрешенными к применению. Для приготовления такого раствора берут 17 мл 27% раствора перекиси водорода, 5 г моющего средства и 978 мл воды. Моющий раствор перекиси водорода допускается применять до появления розовой окраски, что свидетельствует о загрязнении раствора кровью, снижающем эффективность очистки.

Моющий раствор перекиси водорода с синтетическими моющими средствами можно использовать в течение суток с момента изготовления, если цвет раствора не изменился. Неизмененный раствор можно подогревать до 6 раз, в процессе подогрева концентрация перекиси водорода существенно не изменяется.

Раствор моющего средства «Биолот», применяемый как при ручном, так и при механическом способе, используется однократно, так как при повторном использовании фермент, входящий в состав моющего средства, разрушается в процессе очистки.

Последовательность ручной предстерилизационной очистки:

1. Замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия.

При применением «Биолота» первоначальная температура раствора 40±50С;

других моющих средств – 50±50С, время выдержки – 15±1 мин. Температура раствора в процессе мойки не поддерживается.

2. Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона в течение 0,5±0,1 мин.

3. Споласкивание под проточной водой. При применении моющего средства «Биолот» в течение 3,0±1,0 мин.; других моющих средств – 10, ±1,0 мин.

4. Споласкивание дистиллированной водой в течение 0,5±0,1 мин.

5. Сушка горячим воздухом при температуре 850С до полного исчезновения влаги.

Механическую очистку осуществляют с помощью специального оборудования струйным, ротационным методами, ершеванием или с применением ультразвука. Моющие средства те же.

Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают на наличие крови и путем постановки азопирамовой пробы остаточных количеств щелочных компонентов моющего вещества.

Самоконтроль в КДЛ проводиться ежедневно, контролю подвергают не менее 1% от одновременно обрабатываемых изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц.

При положительной пробе на кровь или моющее средство всю группу контролируемых изделий подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов.

Контроль качества предстерилизационной очистки работники санитарно-эпидемиологической службы проводят 1 раз в квартал.

Стерилизация лабораторного инструментария После дезинфекции и предстерилизационной очистки проводят стерилизацию всех изделий, соприкасающихся с раневой поверхностью, контактирующих с кровью или инъекционными препаратами, и отдельных видов медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждения (иглы, скарификаторы, капилляры, предметные стекла, меланжеры и т.д.).

Стерилизация обеспечивает гибель в стерилизуемых изделиях вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов.

Стерилизацию можно проводить воздушным (сухой горячий воздух), паровым (водяной насыщенный пар под избыточным давлением) и химическим (растворы химических препаратов) методами. Выбор метода зависит от особенностей стерилизуемого материала.

Санитарное состояние помещений Все помещения, оборудование, уборочный инвентарь, промаркированный для каждого помещения, должны содержаться в идеальной чистоте. Ветошь, моющие и дезинфицирующие средства должны храниться в промаркированных емкостях, в специальных местах.

Влажная уборка помещений должна осуществляться не менее 1 раза в сутки горячим мыльно-содовым раствором (50 – 600С.), а при необходимости – с применением моющих средств дезинфекции.

Генеральная уборка проводиться 1 раз в неделю по утвержденному графику с обязательной дезинфекции. Во время генеральной уборки тщательно моются стены, оборудование, мебель, проводиться очистка полов от наслоений, пятен и т.д.

1) Требования санэпидрежима в гематологической лаборатории.

2) Как приготовить 0,2%-ый раствор сульфохлорантина-Д в количестве 5 литров?

3) Когда проводят предстерилизационную очистку медицинского инструментария?

4) По каким нормативно-правовым документам проводится аналитическая работа медицинского лабораторного техника?

5) Режимы воздушного метода стерилизации?

6) Режимы парового метода стерилизации?

7) Требования санэпидрежима в гематологической лаборатории.

8) Подготовка рабочего места лаборанта для взятия крови на общий анализ.

Оборудование стола лаборанта, осуществляющего забор крови из пальца и ее обработку Емкость с дезинфицирующим раствором для обработки 1.

загрязненной поверхности стола.

Емкость с дезинфицирующим раствором для обеззараживания 2.

Сосуд с дезинфицирующим раствором для обеззараживания 3.

Широкий сосуд с дезинфицирующим раствором для 4.

обеззараживания предметных стекол.

Емкость с водой для промывания стекол, пипеток и капилляров 5.

перед погружением их в дезинфицирующий раствор.

Емкость для сбора и обработки крови.

Емкость с дезинфицирующим раствором для обработки 7.

использованных ватных шариков.

Широкий сосуд с дезинфицирующим раствором для обработки рук 8.

лаборанта в случае биологической аварии.

9. Стакан с дезинфицирующим раствором для хранения пинцета.

10. Ватные тампоны для обработки рук лаборанта.

Для подсчета эритроцитов: 3% раствор хлорида натрия – 4 мл.

Для подсчета лейкоцитов: 3% раствор уксусной кислоты, 3.

подкрашенный метиленовым синим, – 0,4 мл.

Взятие крови из пальца В лабораторной практике исследуют капиллярную кровь, которую получают путем укола в мякоть 4 пальца левой руки, а у детей раннего возраста из мякоти ступни (большой палец ноги).

Для забора крови используют одноразовые иглы-скарификаторы.

1. Кожу на месте укола протирают 1-ым ватным шариком, смоченным 70%-ым спиртом.

2. Затем вытирают насухо 2-ым ватным шариком.

Прокол кожных покровов осуществляется индивидуальным 3.

4. Скарификатор после использования опускается сразу в дезинфицирующий раствор. Укол лучше производить сбоку от срединной линии, где более густая капиллярная сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от толщины кожи.

Кровь из ранки должна вытекать свободно, так как при сильном надавливании на палец разрушаются форменные элементы крови и возможно смешивание с тканевой жидкостью, приводящее к искажению результатов.

5. Первую каплю после укола удаляют 3-им ватным шариком.

Забор крови осуществляется индивидуальным стерильным 6.

капилляром Панченкова. Для общего анализа крови нужно набрать три капилляра Панченкова:

– 1 капилляр на форменные элементы.

Заполнения капилляра кровью производят самотеком или с помощью резиновой груши.

7. Кровь из капилляра выдувается на предметное стекло с лункой. Все последующие манипуляции (разлив по пробиркам с реактивами, приготовление мазков крови и т.д.) проводятся с кровью, находящейся на предметном стекле.

8. Запрещается промывание капилляра в общем сосуде в процессе забора крови для различных исследований у одного и того же больного.

После проведения манипуляции предметное стекло, на котором 9.

находилась кровь, индивидуальная микропипетка и капилляр Панченкова промываются водой в специальной емкости, причем последние два с помощью резиновой груши, и опускаются в маркированные емкости с дезинфицирующем раствором.

Промывные воды по окончанию работы подлежат обеззараживанию.

Время экспозиции отмечают с последнего опускания капилляра в дезинфицирующее средство.

Наиболее широко в клинике используются следующие гематологические исследования:

цитохимический анализ клеток крови и костного мозга, определение осмотической резистентности эритроцитов, эритроцитометрия.

Взятие крови на исследование При взятии крови необходимо руководствоваться приказами и инструкциями Министерства здравоохранения РБ по профилактике сывороточного гепатита и СПИД в лечебно – профилактических учреждениях, в частности у медицинского персонала, занятого забором и исследованием крови.

С целью предупреждения заражения гепатитом и СПИД забор крови у каждого обследуемого должен производиться индивидуальным набором стерильного материала (копья, капилляры, микропипетки, предметные стекла, пробирки, ватно-марлевые тампоны).

Кровь на исследование берут утром натощак или после легкого завтрака, до физической нагрузки, лечебных или диагностических процедур. В случае необходимости исследования в вечерние часы в бланке анализа указывают время взятия крови. Повторные исследования необходимо производить в одни и те же часы.

Для гематологических исследований чаще используют капиллярную или венозную кровь.

Взятие крови удобно производить за столом, покрытым стеклом или пластиком.

На рабочем месте лаборанта должно быть удобно расположено все необходимое: спирт, индивидуальные стерильные комплекты 70%-ый (содержат скарификатор – копье, капилляр Панченкова, предметные стекла), упаковка стерильных ватных или марлевых шариков, шлифованное стекло для приготовления мазков крови, капилляры на 0,02 мл, 5%-ый лимоннокислый натрий, стерильный пинцет, штатив с предварительно разлитыми реагентами для определения концентрации гемоглобина, количества эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов (при их подсчете в камере); емкости с дезинфицирующим раствором для сброса использованных копьев, ватных шариков, предметных стекол, штатив Панченкова, резиновые груши, простой карандаш для подписывания мазков. При заборе крови лаборант использует маску, защитные очки, фартук, резиновые перчатки.

Забор крови для общего анализа проводится в определенной последовательности:

делают мазки крови для подсчета лейкоцитарной формулы;

1) набирают кровь для определения:

– определения концентрации гемоглобина;

Для исследований используют цельную кровь или стабилизированную 5% раствором трехзамещенного лимоннокислого натрия.

А. Взятие цельной крови для исследования.

В стерильный капилляр от аппарата Панченкова для определения СОЭ, промытый стерильным 5%-ым раствором трехзамещенного цитрата натрия, набирают этот раствор до метки «Р» (50 мм) и вносят в пробирку. Иглой одноразового пользования делают прокол пальца, готовят мазки, тем же капилляром набирают 2 раза кровь до метки «К» (0 мм) и вносят в пробирку с цитратом. Хорошо перемешивают. Этим же капилляром набирают кровь из пальца до метки «К» или с избытком и выливают на стекло с луночкой.

Капилляр помещают в пробирку с цитратной кровью. Кровь, находящуюся на стекле с луночкой, быстро берут для определения концентрации гемоглобина, количества эритроцитов, лейкоцитов.

В капилляр от прибора Панченкова набирают цитратную кровь до метки К (0 мм) и, отметив время, ставят вертикально в штатив для определения СОЭ.

После приобретения навыков взятия крови можно обойтись меньшим количеством (приблизительно 1,5 капилляра) крови.

Б. Забор для исследования цитратной крови.

Капилляром Панченкова набирают 5%-ый раствор цитрата натрия до метки «Р» (50 мм) в пробирку. Этим же капилляром берут 2 капилляра крови до метки «К» и вносят в пробирку с цитратом. Хорошо перемешивают. Этим же капилляром набирают цитратную кровь до метки «К» и ставят в штатив для определения СОЭ. Оставшуюся в пробирке цитратную кровь используют для исследования количества эритроцитов, гемоглобина, лейкоцитов. Поправка на разведение крови цитратом (4:1) вносится умножением полученных результатов на 1,25 или уменьшением объема разводящих жидкостей (3,2 мл физиологического раствора вместо 4, 0 мл при подсчете эритроцитов; 0, 32 мл 3% уксусной кислоты, вместо 5 мл при определении гемоглобина).

Мазки крови для подсчета лейкоцитарной формулы необходимо делать из цельной крови, выступающей после снятия первой капли тампоном.

1) Какие гематологические исследования входят в общий анализ крови?

2)Способы получения крови для гематологических исследований.

3) В какой последовательности проводится общий анализ крови?

4) Какие гематологические исследования входят в общий анализ крови?

Определение гемоглобина крови Унифицированный метод: гемиглобинцианидный.

Гемиглобинцианидный метод с применением ацетонциангидрина.

Принцип. Гемоглобин при взаимодействии с железосинеродистым калием (красная кровяная соль) окисляется в метгемоглобин (гемиглобин) образующий с ацетонциангидрином окрашенный цианметгемоглобин (гемиглобинцианид), интенсивность окраски которого пропорциональна содержанию гемоглобина.

Реактивы Трансформирующий раствор: ацетонциангидрин – 0, 5 мл; калий 1.

железосинеродистый (красная кровяная соль) – 200 мг; натрий двууглекислый (бикарбонат натрия) – 1г; дистиллированная вода – до 1 л. Стабилен при хранении в посуде из темного стекла при комнатной температуре в течение нескольких месяцев. При появлении осадка или обесцвечивании раствор непригоден для употребления.

Калибровочный раствор гемиглобинцианида. В качестве калибровочного раствора могут применяться стандартные растворы гемиглобинцианида или сухие навески гемоглобина. В последнем случае калибровочный раствор готовят по инструкции.

В настоящее время клинико-диагностические лаборатории для определения концентрации гемоглобина пользуются готовыми наборами реагентов, выпускаемыми рядом фирм. Наборы имеют соответствующие инструкции для работы.

Опытная проба:

1) В пробирку налить 5,0 мл трансформирующего раствора.

2) Прилить 0,02 мл крови капилляром Сали (разведение в 251 раз).

3) Хорошо перемешать, оставить стоять при комнатной температуре 10 минут.

4) После чего измерить на фотоэлектроколориметре при длине волны 500 – 560 нм (зеленый светофильтр) в кювете с толщиной слоя 1 см против холостой пробы.

Холостая проба – трансформирующий раствор или вода.

Стандартный раствор измеряют при тех же условиях, что и опытную пробу.

5) Расчет содержания гемоглобина производят по калибровочному графику, построенному по стандартному раствору гемиглобинцианида или по формуле:

Hb = (Е оп / Е ст) •С •К • 0, 01 (г/л), где Еоп– экстинция опытной пробы;

Ест – экстинция стандартного раствора;

С – концентрация гемиглобинцианида в стандартном растворе;

К – коэффициент разведения крови; 0,01 – коэффициент пересчета мг % в г/л.

Построение калибровочного графика. Из стандартного раствора готовят разведения, как указано в таблице:

Клинико-диагностическое значение Снижение уровня гемоглобина в крови является одним из основных лабораторных симптомов анемии. Снижение концентрации гемоглобина обнаруживают при анемиях: постгеморрагических, железодефицитных, сидеробластных, В12 – дефицитных, а также при повышении объема плазмы и от выраженности анемии. Обнаружение сниженного уровня гемоглобина должно повлечь за собой более глубокое и полное обследование.

Повышение концентрации гемоглобина может наблюдаться при эритремии, симптоматических эритроцитозах, снижении объема плазмы (гемоконцентрации). Физиологическое повышение уровня гемоглобина характерно для новорожденных.

1) Принцип гемиглобининцианидного метода определения гемоглобина.

2) О чем свидетельствует снижение концентрации гемоглобина?

3) О чем свидетельствует повышение гемоглобина?

Подсчет количества форменных элементов крови Подсчет количества форменных элементов крови производят с помощью счетной камеры Горяева.

Камера Горяева – толстое, прямоугольное прозрачное стекло, прорезанное четырьмя поперечными бороздами. Борозды делят стекло на пластинки – 2 боковые и 1 среднюю. Средняя пластинка пересечена поперечной канавкой (бороздкой) на 2 равные части. Средняя пластинка на 0,1 мм ниже боковых. На каждой половине средней пластинки нанесена сетка Горяева. Сетка Горяева квадратная. Сторона сетки 3 мм, площадь 9 мм2. Сетка разделена на 225 больших квадратов (15 – по горизонтали, 15 – по вертикали).

Часть больших квадратов (через два на третий) разделена на 16 малых.

Сторона малого квадрата равна 1/20 мм.

Подсчет в камере производят под малым увеличением (объектив 8, окуляр 10 или 15, конденсор опущен, диафрагма прикрыта).

Камеру устанавливают на предметный столик микроскопа. Под малым увеличением находят изображение камеры, устанавливают в поле зрения верхний левый угол сетки. Передвигая стекло левой рукой, последовательно изучают отдельные малые и большие квадраты всей сетки камеры.

Подготовка камеры Горяева к работе

1) Камеру и шлифованное покровное стекло моют водопроводной водой, насухо вытирают.

2) На участок камеры с нанесенными сетками укладывают шлифованное покровное стекло, осторожно нажимая большими пальцами на края покровного стекла, его притирают к боковым пластинкам камеры до появления радужных колец (кольца Ньютона).

3) Каплю исследуемой жидкости помещают перед щелью, образующейся между покровным стеклом и счетной камерой. В силу закона капиллярности жидкость заполняет пространство под покровным стеклом над сеткой. При заполнении камеры надо стараться, чтобы исследуемая жидкость не растекалась в борозды камеры и чтобы в камеру не попали пузырьки воздуха.

Все это может изменить правильное распределение элементов крови в камере.

Равномерность заполнения и распределения форменных элементов крови по сетке камеры проверяют под микроскопом.

4) После заполнения, камеру оставляют стоять на 1 – 2 мин, чтобы элементы крови осели на дно и движение их прекратилось.

Определение количества эритроцитов в камере по Николаеву Принцип метода основан на подсчете эритроцитов в строго определенном объеме камеры при постоянном разведении крови.

Реактивы № 1 – 9 г/л раствор хлорида натрия (можно использовать 8,5 – 30 г/л раствор) или № 2 – раствор Гайема: ртуть хлористая 0,5 г; натрия сульфат 5,0 г; натрия хлорид 1,0 г; вода, дистиллированная до 200 мл.

1) В сухую чистую пробирку отмеряют 4 мл реактива №1 или №2.

2) Пипеткой Сали набирают 0,02 мл крови из пальца, вытирают кончик пипетки фильтровальной бумагой или марлей, выдувают кровь на дно пробирки с разводящей жидкость (разведение крови в 200 раз). Пипетку тщательно промывают в верхнем слое жидкости.

3) Содержимое пробирки перемешивают и оставляют стоять до момента счета. Подсчет эритроцитов следует провести не позднее 2 – 3 часов после забора крови.

4) Готовят камеру Горяева. Шлифованное стекло притирают до появления радужных колец, наличие которых свидетельствует о соблюдении необходимой высоты и объема камеры. Правильное заполнение счетной камеры, разведенной кровью, обеспечивает точность подсчета форменных элементов.

5) Перед заполнением камеры содержимое пробирки перемешивают несколько раз, вращая пробирку между ладонями.

6) Затем концом круглой стеклянной палочки или пастеровской пипеткой наносят каплю разведенной крови на среднюю пластинку камеры у края покровного стекла. Проверяют равномерность растекания капли, отсутствие пузырьков воздуха. После заполнения камеру нужно положить на стол на 1 – 2 мин, пока движение жидкости в ней не прекратится, и эритроциты не осядут.

7) Подсчитывают эритроциты при малом увеличении микроскопа – объектив 8, окуляр 10 или 15 в затемненном поле зрения (с прикрытой диафрагмой или при опущенном конденсоре) в 5 больших расчерченных квадратах, расположенных по диагонали. Каждый такой квадрат разделен на 16 малых квадратов, т.е. эритроциты считают в 80 малых квадратах. При этом, чтобы не допустить ошибки в подсчете и не посчитать дважды одни и те же эритроциты, в счет включают эритроциты, лежащие внутри квадрата и на двух определенных его сторонах (например, на левой и нижней линиях).

Расчет количества эритроцитов в 1 мкл крови проводят по формуле:

Х= (а • 4000 • 200)/ 80•106 Где Х – количество эритроцитов в 1 мкл крови; а – сумма сосчитанных эритроцитов в 80 малых квадратах; 4000 – множитель, приводящий результат к объему в 1 мкл крови, так как объем малого квадрата равен 1/4000 мкл; 200 – разведение крови.

После проведения арифметического действия формула упрощается:

Поэтому число эритроцитов в 1 мкл крови равно количеству эритроцитов, сосчитанных в 80 малых квадратах (5 больших), умноженному на 10 000. Например, в 5 больших квадратах камеры Горяева подсчитано 390 эритроцитов. В 1 мкл крови количество эритроцитов составило 390 •10 000 = 3 900 000. Чтобы выразить содержание эритроцитов в 1 л крови нужно количество эритроцитов в миллионах умножить на 10 12, т. к. 3 900 000 эритроцитов в 1 мкл крови = 3,9 • 1012 /л.

Бывают следующие источники ошибок:

Неточность взятия крови в пипетку.

Образование сгустка, который, поглощая часть клеток, приводит к 2.

заниженным результатам исследования.

Неравномерное заполнение камеры, образование пузырьков воздуха.

Неправильное притирание шлифованного покровного стекла (отсутствие радужных колец), что приводит к изменению высоты камеры. Имеет значение толщина покровного стекла, она должна быть не менее 0,3 мм.

Подсчет эритроцитов сразу после заполнения камеры, не выжидая 5.

1 минуты. При этом эритроциты не успевают осесть на дно, количество их при счете оказывается заниженным.

Подсчет меньшего, чем требуется по методике, количества квадратов.

Недоброкачественность разводящей жидкости для эритроцитов.

Плохо вымытые камера, пробирка, пипетка, капилляр для взятия 8.

крови, недостаточно просушенные пипетки, пробирка.

Правила подсчёта форменных элементов крови в камере Горяева Для того чтобы дважды не сосчитать одни и те же клетки, лежащие на пограничных линиях, следует соблюдать следующие правила: к данному квадрату принадлежат клетки, находящиеся большей своей половиной внутри него; клетки, разделенные пограничной линией пополам, считают только на верхней и левой границе квадрата; клетки же, лежащие большей своей половиной вне данного квадрата не считают вовсе.

Увеличение количества эритроцитов выше нормы называют эритроцитозом, снижение – эритроцитопенией.

Снижение количества эритроцитов наблюдается при анемиях различной этиологии, увеличения объема плазмы. Повышение количества эритроцитов возникает при симптоматических эритроцитозах, эритремии, наследственных эритроцитозах, уменьшении объема плазмы.

На уровень эритроцитов влияют возраст, пол, физическая нагрузка, эмоциональное состояние.

Подсчет количества лейкоцитов в камере по Николаеву Принцип. Принцип метода основан на подсчете лейкоцитов в 1 мкл крови при постоянном ее разведении и определенном объеме счетной камеры.

Реактив. Раствор уксусной кислоты (30 – 50 г/л), подкрашенный водным раствором метиленового синего (10 г/л) или раствором генцианвиолета (10 г/л).

1) В пробирку наливают 0,4 мл раствора уксусной кислоты.

2) Пипеткой на 0,02 мл точно набирают кровь, осторожно выдувают ее в разводящую жидкость и ополаскивают ею пипетку.

3) Смесь хорошо перемешивают. Разведение крови 1:20.

4) Чистое и сухое покровное стекло притирают к камере Горяева так, чтобы появились радужные кольца. Перед заполнением камеры Горяева пробирку с разведенной кровью тщательно встряхивают.

5) Концом круглой стеклянной палочки отбирают разведенную кровь и наносят на край шлифованного стекла камеры. После заполнения камеры ее оставляют на 1 мин в покое для оседания лейкоцитов.

6) Затем подсчитывают лейкоциты при малом увеличении микроскопа (объектив 8, окуляр 10 или 15) при затемненном поле зрения (при опущенном конденсоре или суженной диафрагме).

7) Лейкоциты считают в 100 неразграфленных больших квадратах, что соответствует 1600 малым (100 • 16).

Расчет. Результаты подсчета лейкоцитов в больших квадратах суммируют и производят вычисление их количества в 1 мкл крови по формуле:

Х = (а • 4000 • 20) / 1600•106 Где Х – количество лейкоцитов в 1 мкл. крови; а – количество форменных элементов, сосчитанных в 100 больших квадратах; 1600 – количество малых квадратов; 20 – разведение крови; 4000 – множитель, приводящий результат к объему 1 мкл крови, исходя из объема малого квадрата (1 / 4000 мкл).

После проведения арифметического действия формула упрощается: а • 50 или (а • 100) / 2, т. е. для определения количества лейкоцитов в 1 мкл подсчитанное количество лейкоцитов в 100 больших квадратах (1600 малых) умножают на 50 или полученную при подсчете сумму лейкоцитов делят пополам и прибавляют два нуля. Для перевода в единицы СИ (в 1 л крови) полученную цифру еще умножают на 106.

Например. В 100 больших квадратах подсчитано 160 лейкоцитов. В 1 мкл – (160:2)• 100 – 80 • 100 – 8000. В 1 л – 8000 • 106 – 8,0 • 109/л.

Норма. Количество лейкоцитов у взрослых колеблется от 4,0 • 109/л до 9,0 • 109/л.

Клинико-диагностическое значение Трактовать изменения количества лейкоцитов следует с учетом индивидуальной нормы. Увеличение количества лейкоцитов выше нормы называют лейкоцитозом, снижение – лейкоцитопенией.

Лейкоцитозы наблюдаются при инфекционно – воспалительных процессах, интоксикациях, лейкозах.

Лейкопении – при угнетении кроветворения, вирусных инфекциях. На уровень лейкоцитов оказывает влияние физическая нагрузка, эмоциональное состояние, прием большого количества пищи и др. В большинстве случаев лейкоцитозы и лейкопении связаны с увеличением или уменьшением количества нейтрофилов.

1) Что представляет собой камера Горяева?

2) Как проводится подготовка камеры Горяева к работе?

3) Что необходимо подготовить для подсчета количества эритроцитов в камере?

4) Формула расчета количества эритроцитов.

5) Источник ошибок при подсчете эритроцитов в камере Горяева.

6) Метод подсчета лейкоцитов в камере Горяева.

7) Формула расчета количества лейкоцитов.

Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ).

Унифицированный микрометод Панченкова Принцип. Кровь, смешанная с раствором цитрата натрия, не свертывается при стоянии, а разделяется на два слоя: верхний – плазму, нижний – эритроциты. В зависимости от изменений физико–химических свойств исследуемой крови оседание эритроцитов происходит с различной скоростью.

Реактив. 50 г/л водный раствор трехзамещенного цитрата натрия.

Специальное оборудование. Аппарат Панченкова, состоящий из штатива и специальных капилляров. Штатив предназначен для установки капилляров в вертикальном положении. Капилляр Панченкова – это пипетка с делениями от 0 до 100 мм. Верхнее деление шкалы отмечено «0» и буквой «К»

(кровь). Через каждые 10 делений имеются цифры: 10, 20, 30, 40 и т. д. до 100.

Против цифры 50 имеется буква «Р» (реактив).

Рис. 3. Штатив Панченкова Ход определения

1) Капилляр Панченкова промывают раствором цитрата натрия, набирают его до метки «Р» и выдувают на стекло с лункой или в пробирку.

2) Тем же капилляром набирают 2 раза кровь из пальца до метки «К» и вносят ее в отмеренный раствор цитрата натрия.

3) Тщательно перемешивают кровь с цитратом натрия и тотчас набирают смесь до метки «0», стараясь при этом избегать попадания пузырьков воздуха.

Разведение крови в капилляре равно 1:4 (1 объем антикоагулянта, 4 объема крови).

4) Верхний конец капилляра с цитратной кровью закрывают указательным пальцем, с нижнего конца удаляют остатки крови. Капилляр быстро устанавливают в штатив в строго вертикальном положении. Для этого, поддерживая левой рукой штатив Панченкова, концом капилляра придавливают одну из резиновых прокладок штатива, чтобы кровь из капилляра не выливалась. Сняв указательный палец с верхнего конца капилляра, продвигают капилляр до упора в верхнюю резиновую прокладку штатива. Установив капилляр с цитратной кровью в аппарат Панченкова, сразу отмечают время.

Учет результата реакции проводят через 1 час. Величину оседания определяют по столбику плазмы над осевшими эритроцитами. Для этого высчитывают, сколько делений шкалы занимает слой плазмы, образующийся в результате оседания эритроцитов. Ответ записывают как величину СОЭ в миллиметрах в час (мм/ч). При анемиях иногда не видна резкая граница между плазмой и эритроцитарным столбиком. Над компактной массой эритроцитов образуется светлая «вуаль» из неосевших эритроцитов. В таком случае определяется граница компактного слоя, а эритроцитарная «вуаль»

причисляется к столбику плазмы.

Заполнять капилляр сплошным столбиком крови без пузырьков 3.

воздуха. Желательно, чтобы кровь поступала в капилляр свободно, без особого надавливания на палец. По закону капиллярности кровь затекает в пипетку, когда конец ее опущен.

Соблюдать правильные соотношения цитрата натрия и взятой крови (1:4).

Тщательно смешивать взятую кровь с цитратом натрия.

Устанавливать капилляры с кровью в аппарат Панченкова в строго 6.

До учетов результатов реакции не рекомендуется переносить штатив с капиллярами, так как при этом увеличивается СОЭ.

Определять СОЭ при температуре 18 — 22С. При температуре ниже 18С оседание эритроцитов замедляется, выше 22С – ускоряется.

Клинико-диагностическое значение Увеличению СОЭ способствует увеличение содержания глобулинов, фибриногена в крови, лейкозов, злокачественных новообразований.

Замедление СОЭ характерно для состояний, сопровождающихся сгущением крови, увеличением содержания альбуминов, желчных кислот. Нормальные показатели СОЭ не всегда свидетельствуют об отсутствии патологического процесса.

1) Причины ошибок при определении СОЭ.

2) Следует ли ожидать повышения СОЭ при миеломной болезни?

3) Какой реактив используется при постановке скорости оседания эритроцитов?

«Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Северный государственный медицинский университет» Министерство здравоохранения Российской Федерации Е.Р. Корниенко ПЕДАГОГИКА Учебное пособие для иностранных студентов Архангельск УДК 378.661(075.8) ББК 74.484.7я73 К 67 Рецензенты: Т.С. Буторина, доктор педагогических наук, профессор, заведующая кафедрой педагогики, психологии и профессионального обучения Северного (Арктического) федерального. »

«МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ ГУО «БЕЛОРУССКАЯ МЕДИЦИНСКАЯ АКАДЕМИЯ ПОСЛЕДИПЛОМНОГО ОБРАЗОВАНИЯ» А.С. Почкайло, В.Ф. Жерносек, Э.В. Руденко Н.В. Почкайло, Е.В. Ламеко СОВРЕМЕННЫЕ ПОДХОДЫ К ДИАГНОСТИКЕ, ЛЕЧЕНИЮ И ПРОФИЛАКТИКЕ РАХИТА У ДЕТЕЙ учебно-методическое пособие Минск УДК: 616.71-007.151-07-08-084-053.2(075.9) ББК: 57.33я73 С 56 Рекомендовано в качестве учебно-методического пособия УМС ГУО «Белорусская медицинская академия последипломного образования», протокол № 2 от. »

«Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого» Министерства здравоохранения Российской Федерации ГБОУ ВПО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого Минздрава России Фармацевтический колледж Сестринский уход в акушерстве и гинекологии СБОРНИК МЕТОДИЧЕСКИХ УКАЗАНИЙ ДЛЯ ОБУЧАЮЩИХСЯ К ВНЕАУДИТОРНОЙ (САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ) РАБОТЕ по специальности34.02.01Сестринское дело. »

«АВТОРЫ: заведующий кафедрой медицинской реабилитации учреждения образования «Гродненский государственный медицинский университет», доктор медицинских наук, профессор Л.А.Пирогова; доцент кафедры медицинской реабилитации учреждения образования «Гродненский государственный медицинский университет», кандидат медицинских наук, доцент Г.Н.Хованская РЕЦЕНЗЕНТЫ: заведующий кафедрой медицинской реабилитации и физиотерапии учреждения образования «Белорусский государственный медицинский университет». »

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Кемеровский государственный университет» Филиал в г. Прокопьевске (ПФ КемГУ) (Наименование факультета (филиала), где реализуется данная дисциплина) Рабочая программа дисциплины (модуля) Б3.Б.13 Основы социальной медицины (Наименование дисциплины (модуля)) Направление подготовки 39.03.02/040400.62 Социальная работа (шифр, название. »

«Министерство здравоохранения Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное учреждение «Государственный научно-исследовательский центр профилактической медицины» Минздрава России ДИСПАНСЕРИЗАЦИЯ ОПРЕДЕЛЕННЫХ ГРУПП ВЗРОСЛОГО НАСЕЛЕНИЯ Методические рекомендации М О С К В А 2 Министерство здравоохранения Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное учреждение «Государственный научно-исследовательский центр профилактической медицины» Минздрава России «УТВЕРЖДАЮ» Главный. »

«Министерство здравоохранения Республики Беларусь УО «Витебский государственный медицинский университет» Кафедра социально-гуманитарных наук КОНСТИТУЦИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ ПРАВОВАЯ ОСНОВА ИДЕОЛОГИИ БЕЛОРУССКОГО ГОСУДАРСТВА Витебск УДК 342.4 (476) ББК 67.400.1 (4ДИ)+66.0(4ДИ) Рецензенты: кандидат исторических наук, доцент Л.В. Лукина, УО «Витебская ордена Знак Почта государственная академия ветеринарной медицины» кандидат исторических наук, ст. преподаватель Н.Е. Мусина, УО «Витебский. »

«ПРЕДИСЛОВИЕ Начало перехода к цифровому телевизионному (ТВ) вещанию стало подлинной революцией на рубеже XX–XXI веков. Цифровое телевидение, дающее значительное увеличение эффективности передачи по каналам связи сигналов изображения и звука, увеличение числа программ и сервиса для телезрителей, должно занять ведущее положение в ТВ вещании, поэтому подготовка специалистов по цифровому ТВ является важной задачей. Области применения методов кодирования и сжатия видеоинформации весьма разнообразны. »

«Олег Валентинович Леонтьев Юридические основы медицинской деятельности. Практикум по правоведению. Учебное пособие http://www.litres.ru/pages/biblio_book/?art=10245386 Олег Валентинович Леонтьев. Юридические основы медицинской деятельности. Практикум по правоведению. Учебное пособие: СпецЛит; Санкт-Петербург; 2015 ISBN 978-5-299-00586-8 Аннотация В пособии приведены правовые основы медицинской деятельности в соответствии с требованиями Государственного образовательного стандарта Российской. »

«ЛИСТ СОГЛАСОВАНИЯ от 19.06.2015 Рег. номер: 3165-1 (19.06.2015) Дисциплина: Основы медицинских знаний Учебный план: 37.03.01 Психология/4 года ОДО; 37.03.01 Психология/5 лет ОЗО Вид УМК: Электронное издание Инициатор: Глухих Татьяна Анатольевна Автор: Глухих Татьяна Анатольевна Кафедра: Кафедра медико-биологических дисциплин и безопасности жизнедеяте УМК: Институт психологии и педагогики Дата заседания 21.04.2015 УМК: Протокол № 10 заседания УМК: Дата Дата Результат Согласующие ФИО Комментарии. »

«Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Смоленский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СГМУ Минздрава России) Система менеджмента качества СМК-ОП-5.-6 Процесс ОП-5. «Реализация основных образовательных программ» стр. 2 из 20 Положение об учебных изданиях в СГМУ Термины, обозначения, сокращения: перечень использованных специфических сокращений СМК – система менеджмента качества;. »

«Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО ВолгГМУ Минздрава России) Кафедра русского языка русского языка и социально-культурной адаптации МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ по самостоятельной работе для студентов по дисциплине «Научный стиль речи» (Специальность «Педагогическое образование») 2014 год Государственное бюджетное образовательное. »

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РФ ФГБОУ ВПО «МАРИЙСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ» Институт медицины и естественных наук Л. А. ЖУКОВА О. П. ВЕДЕРНИКОВА Т. М. БЫЧЕНКО Г. О. ОСМАНОВА ЛЕКАРСТВЕННЫЕ РАСТЕНИЯ РАЗНООБРАЗИЕ ЖИЗНЕННЫХ ФОРМ Учеб ное по соби е Йошкар-Ола УДК 58 ББК Е5.я7 Ж 860 Рецензенты: Н. П. Савиных, д-р биол. наук, профессор Вятского государственного гуманитарного университета, г. Киров; А. А. Нотов, д-р биол. наук, профессор Тверского государственного университета, г. Тверь; В. »

«Методические рекомендации по учёту в АИС ОМС профилактических, предварительных и периодических медицинских осмотров несовершеннолетних (версия 1.6, 2015) Нормативные документы по организационным вопросам: приказ Министерства здравоохранения Российской Федерации от 21.12.2012 № 1346н «О порядке прохождения несовершеннолетними медицинских осмотров, в том числе при поступлении в образовательные учреждения и в период обучения в них»;приказ ФФОМС от 01.12.2010 №230 (в редакции приказа ФФОМС от. »

«основы СЕСТРИНСКОГО ДЕЛА АЛГОРИТМЫ МАНИПУЛЯЦИЙ УЧЕБНОЕ ПОСОБИЕ ДЛЯ МЕДИЦИНСКИХ УЧИЛИЩ И КОЛЛЕДЖЕЙ Рекомендовано ГОУ ВПО «Московская медицинская академия имени И.М. Сеченова» в качестве учебного пособия для студентов учреждений среднего профессионального образования, обучающихся по специальностям 060109.52 «Сестринское дело» и 060101.52 «Лечебное дело» по дисциплине «Основы сестринского дела» УДК 616-083(07) ББК 53.5я7 0-75 Регистрационный №641 рецензии от 25.12.2009 г. ФГУ Федеральный институт. »

«АВТОРЫ: заведующий кафедрой фтизиопульмонологии учреждения образования «Гомельский государственный медицинский университет», кандидат медицинских наук, доцент И.В.Буйневич; доцент кафедрой фтизиопульмонологии учреждения образования «Гомельский государственный медицинский университет», кандидат медицинских наук, доцент Д.Ю.Рузанов РЕЦЕНЗЕНТЫ: профессор кафедры фтизиопульмонологии учреждения образования «Гродненский государственный медицинский университет», доктор медицинских наук, доцент. »

«ГБОУ ВПО «Смоленский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ДЛЯ СТУДЕНТОВ по разделу «Госпитальная хирургия» дисциплины госпитальная хирургия, детская хирургия Автор-составитель: доц. Ю.И.Ломаченко Методические указания утверждены на методическом совещании кафедры госпитальной хирургии (протокол № 1 от «31» августа 2015 г.) Зав. кафедрой, д.м.н., профессор ( Д.В.Нарезкин) Тема клинического практического занятия. »

«Утверждаю Председатель Высшего экспертного совета В.Д. Шадриков «»2013 г. ОТЧЕТ о результатах независимой оценки основной профессиональной образовательной программы 060501 Сестринское дело ГБОУ ВПО ХМАО – Югры «Ханты-Мансийская государственная медицинская академия»Менеджер: _ /Захватова Е.В/.Эксперты: _ / Котова Т.А./ _/ Ушакова Н.В./ _ / Жуков И.С. / Москва – 2013 Оглавление I. ОБЩАЯ ИНФОРМАЦИЯ О ПРОФЕССИОНАЛЬНОМ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОМ УЧРЕЖДЕНИИ II. ОТЧЕТ О РЕЗУЛЬТАТАХ НЕЗАВИСИМОЙ ОЦЕНКИ ОСНОВНОЙ. »

«Министерство здравоохранения и социального развития Российской Федерации Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Российская академия медицинских наук, отделение профилактической медицины ФБУН «Федеральный научный центр медико-профилактических технологий управления рисками здоровью населения» Управление Роспотребнадзора по Пермскому краю ФГБОУ ВПО «Пермский государственный национальный исследовательский университет»ГИГИЕНИЧЕСКИЕ И. »

«УДК 159.9:331.101.3 ОТНОШЕНИЕ К ЗДОРОВЬЮ У СОТРУДНИКОВ ПОЛИЦИИ ПРИМОРСКОГО КРАЯ 1Корнилова Д.С., 1Петрова Ю.И., 1Асриян О.Б., 1Черемискина И.И. ГБОУ ВПО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Минздрава России, Владивосток, Россия (690002, Владивосток, проспект Острякова, д.2), e-mail: mail@vgmu.ru В данной статье представлены результаты исследования отношения к здоровью у сотрудников полиции Приморского края. Актуальность исследования обусловлена возрастающим вниманием к. »

2016 www.metodichka.x-pdf.ru — «Бесплатная электронная библиотека — Методички, методические указания, пособия»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.

источник



Источник: domofoniya.com


Добавить комментарий